实验二 细菌的革兰氏染色法
一、目的要求
1. 掌握革兰氏染色的方法及原理。
2. 进一步熟悉显微镜的使用
二、基本原理
1. 革兰氏染色的意义:
革兰氏染色的反应是细菌分类和鉴定的重要性状。它是1884年由丹麦医生Gram创立的。革兰氏染色法(Gram stain)不仅能观察到细菌的形态特征而且还可将
+所有细菌区分为两大类:染色反应呈蓝紫色的称为革兰氏阳性细菌,用G表示;
染色反应呈红色(复染颜色)的称为革兰氏染色阴性细菌,用G-表示。
2. 革兰氏染色的原理:
细菌对于革兰氏染色的不同反应,是由于它们细胞壁的成分和结构不同造成的。革兰氏阳性细菌的细胞壁主要是肽聚糖形成的网状结构组成的,在染色过程中,当用乙醇处理时,由于脱水而引起网状结构中的孔径变小,通透性降低,使结晶紫-碘复合物被保留在细胞内而不易着色,因此,呈现蓝紫色;革兰氏阴性细菌的细胞壁中肽聚糖含量低,而脂类物质含量高,当用乙醇处理时,脂类物质溶解,细胞壁的通透性增加,使结晶紫-碘复合物易被乙醇抽出而脱色,然后又被染上了复染液(番红)的颜色,因此呈现红色。
三、器材
大肠杆菌,金黄色葡萄球菌12~20h斜面培养物;革兰氏染液,载玻片,显微镜等。
四、操作步骤
1. 涂片 取两块载玻片,各滴一小滴蒸馏水于玻片中央,用接种环以无菌操作分别从培养14~16h的枯草芽孢杆菌和培养24h的大肠杆菌的斜面上挑取少量菌苔于水滴中,混匀并涂成薄膜。
载玻片要洁净无油迹;滴蒸馏水和取菌不宜过多;涂片要均匀,不宜过厚。
2. 干燥 室温自然干燥。
3. 固定 固定时通过火焰2~3次即可。此过程称热固定,其目的是使细胞质凝固,以固定细胞形态,并使之牢固附着在载玻片上。
热固定温度不易过高,以载玻片背面不烫手为宜,否则会改变甚至破坏细胞形态。
4. 初染 加草酸铵结晶紫一滴,约1~2min,水洗。
5. 媒染 滴加碘液冲去残水,并覆盖约1min,水洗。
6. 脱色 将载玻片上面的水甩净,并衬以白背景,用95%酒精滴洗至流出酒精刚刚不出现蓝色时为止,约20~30s,立即用水冲净酒精。
7. 复染 用番红液染1~2min,水洗
8. 镜检 干燥后,置油镜下观察。革兰氏阴性菌呈红色,革兰氏阳性菌呈紫色。以分散开的细菌的革兰氏染色反应为准,过于密集的细菌,常常呈假阳性。
补充:混合涂片法
按上述方法,在同一玻片上,以大肠杆菌和金黄色葡萄球菌混合涂片、染色、镜检进行比较。
五、注意事项
1 革兰氏染色的关键在于严格掌握酒精脱色程度,如脱色过度,则阳性菌可被误染为阴性菌;而脱色不够时,阴性菌可被误染为阳性菌。
2 菌龄也影响染色结果,如阳性菌培养时间过长,或已死亡及部分菌自行溶解了,都常呈阴性反应。
六、实验报告
1. 绘出大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的形态图,注明放大倍数及颜色。
2. 列表说明P84
第二篇:细菌的简单染色
实验二 细菌的简单染色、革兰氏染色
虽然各种类型的显微镜能够观察到微生物的各种形态结构,但一般实验室常用的是普通光学显微镜。由于细菌体积小且透明,在活体细胞内又含有大量的水分,因此,对光线的吸收和反射与水溶液相差不大。当把细菌悬浮在水滴内,放在显微镜下观察时,由于与周围背景没有显著的明暗差,难于看清它们的形状,更谈不上识别其细微结构。而经过染色,就可借助颜色的反衬作用比较清楚地看到菌体形态,亦即菌体表面及内部结构着色与背景形成鲜明对比,这样便可在普通光学显微镜下清晰地观察到微生物的形状和结构,而且还可以通过不同的染色反应来鉴别微生物的类型和区分死、活细菌等,因此,微生物染色技术是观察微生物形态结构的重要手段。
本实验通过对细菌的染色观察,使同学们在掌握细菌染色技术的基础上,了解各种其他的染色制片技术;观察微生物的各种形态结构,以巩固课堂知识,增强感性认识。
一、目的要求
1.学习微生物涂片、染色的基本技术,掌握细菌的单染色方法及无菌操作技术。
2.巩固显微镜的使用方法。
二、基本原理
1.简单染色法:所谓单染色法是利用单一染料对细菌进行染色的一种方法。此法操作简便,适用于菌体一般形态的观察。
在中性、碱性或弱酸性溶液中,细菌细胞通常带负电荷,所以常用碱性染料进行染色。碱性染料并不是碱,和其他染料一样是一种盐,电离时染料离子带正电,易与带负电荷的细菌结合而使细菌着色。例如,美蓝(亚甲蓝)实际上是氯化亚甲蓝盐,它可被电离成正、负离子:
带正电荷的染料离子可使细菌细胞染成蓝色。常用的碱性染料除美蓝外,还有结晶紫(crystal violet)、碱性复红(basicfu-chsin)、番红(又称沙黄,safranine)等。
细菌体积小,较透明,如未经染色常不易识别,而经着色后,与背景形成鲜明的对比,使易于在显微镜下进行观察。
2.革兰氏染色法:是1884年由丹麦病理学家C.Gram所创立的。革兰氏染色法可将所有的细菌区分为革兰氏阳性菌(G+)和革兰氏阴性菌(G—)两大类,是细菌学上最常用的鉴别染色法。该染色法所以能将细菌分为G+菌和G—菌,是由这两类菌的细胞壁结构和成分的不同所决定的。
G—菌的细胞壁中含有较多易被乙醇溶解的类脂质,而且肽聚糖层较薄、交联度低,故用乙醇脱色时溶解了类脂质,增加了细胞壁的通透性,使初染的结晶紫和碘的复合物易于渗出,结果细菌就被脱色,再经复红复染后就成红色。
G+菌细胞壁中肽聚糖层厚且交联度高,类脂质含量少,经脱色剂处理后反而使肽聚糖层的孔径缩小,通透性降低,因此细菌仍保留初染时的颜色。
革兰氏染色需用四种不同的溶液:碱性染料(basic dye)初染液;媒染剂(mordant);脱色剂(decolorising agent)和复染液(counterstain)。碱性染料初染液的作用象在细菌的单染色法基本原理中所述的那样,而用于革兰氏染色的初染液一般是结晶紫(crystal violet)。媒染剂的作用是增加染料和细胞之间的亲和性或附着力,即以某种方式帮助染料固定在细胞上,使不易脱落,碘(iodine)是常用的媒染剂。脱色剂是将被染色的细胞进行脱色,不同类型的细胞脱色反应不同,有的能被脱色,有的则不能,脱色剂常用95%的酒精(ethanol)。复染液也是一种碱性染料,其颜色不同于初染液,复染
的目的是使被脱色的细胞染上不同于初染液的颜色,而未被脱色的细胞仍然保持初染的颜色,从而将细胞区分成G+和G-两大类群,常用的复染液是复红。
三、器材
1、活材料:培养24小时的大肠杆菌和葡萄球菌。
2、染色液和试剂:碱性美兰、结晶紫、碘液、95%酒精、石炭酸复红 、蒸馏水、乙醚-乙醇混合液、香柏油。
3、器材:废液缸、洗瓶、载玻片、接种杯、酒精灯、擦镜纸、显微镜。
四、操作步骤
1、简单染色:
(1)涂片:取干净载玻片一块,在载玻片中央加一滴蒸馏水,按无菌操作法取大肠杆菌涂片,调匀并涂成薄膜,注意滴生理盐水时不宜过多,涂片必须均匀,做成浓菌液,注意取菌不要太多。
(2)晾干:让涂片自然晾干或者在酒精灯火焰上方文火烘干。
(3)固定:手执玻片一端,让菌膜朝上,通过火焰2-3次固定(以不烫手为宜),使细胞质凝固,以固定细菌的形态,并使其不易脱落。但不能在火焰上烤,否则细菌形态将毁坏
(4)染色:将固定过的涂片放在废液缸上的搁架上,加复红染色1-2min
(5)水洗:用水洗去涂片上的染色液,直至冲下之水无色时为止。
(6)干燥:将洗过的涂片放在空气中晾干或用吸水纸吸干。
(7)镜检:先低倍观察,再高倍观察,并找出适当的视野后,将高倍镜转出,在涂片上加香柏油一滴,将油镜头浸入油滴中仔细调焦观察细菌的形态。
2、革兰氏染色:
(1)涂片
(2)晾干
(3)固定,与简单染色法相同
(4)结晶紫染色:将玻片置于废液缸玻片搁架上,加适量(以盖满细菌涂面)的结晶紫染色液染色1分钟;水洗:倾去染色液,用水小心地冲洗。
(5)媒染:碘液,媒染1min;水洗:用水洗去碘液。
(6)脱色:将玻片倾斜,连续滴加95%乙醇脱色20—25s至流出液无色,立即水洗。
(7)复染:滴加复红复染3-5min;水洗:用水洗去涂片上的复红染色液。
(8)晾干:将染好的涂片用吸水纸吸干。
(9)镜检:镜检时先用低倍,再用高倍,最后用油镜观察,并判断菌体的革兰氏染色反应性。
(10)实验完毕后的处理:
①将浸过油的镜头按下述方法擦拭干净,
a.先用擦镜纸将油镜头上的油擦去。
b.用擦镜纸沾少许乙醚-乙醇混合液将镜头擦2-3次。
c.再用干净的擦镜纸将镜头擦2-3次。注意擦镜头时向一个方向擦拭。将显微镜小心轻拿,按号放入显微镜柜中。
②观察后的染色玻片用废纸将香柏油擦干净,放入回收容器内。
五.注意事项
1.革兰氏染色成败的关键是酒精脱色。如脱色过度,革兰氏阳性菌也可被脱色而染成阴性菌;如脱色时间过短,革兰氏阴性菌也会被染成革兰氏阳性菌。脱色时间的长短还受涂片厚薄及乙醇用量多少等因素的影响,难以严格规定。
2.染色过程中勿使染色液干涸。用水冲洗后,应吸去玻片上的残水,以免染色液被稀释而影响染色效果。
3.选用幼龄的细菌。G+菌培养12h-16h,E.coli培养24h。若菌龄太老,由于菌体死亡或自溶常使革兰氏阳性菌转呈阴性反应。
五、实验报告
1.结果
绘出葡萄球菌和大肠杆菌的形态图,并注明两菌的革兰氏染色的反应性。
2.思考题
(1)作革兰氏染色涂片为什么不能过于浓厚?
(2)其染色成败的关键一步是什么?