植物组织含水量的测定实验报告

时间:2024.4.20

植物组织含水量的测定实验报告

09生科 XX

一、实验原理

1.反映植物水分状况的一个重要指标;

2.直接影响植物的生长、气孔状况,光合功能及作物产量;

3.环境胁迫下,反映植物受胁迫程度的重要指标之一;

4.水分含量测定也是农作物产品的品质检定和判断其是否适于贮藏的重要标准;

5.所以,植物组织含水量的测定在植物生理学研究及农业生产中具有重要的理论和实践意义。

6.  植物组织含水量的表示方法,常以鲜重、干重、相对含水量 (或称饱和含水量)来表示。

7.  相对含水量可作为比较植物保水能力及推算需水程度的指标。

二、实验目的

测定植物的组织含水量,以检测植物体内的水分情况,并对不同植物的含水量进行对比

三、实验材料

鹅绒藤、培养皿、镊子、吸水纸、烘箱、玻璃杯、蒸馏水

四、实验步骤

1.  将新采的植物叶片,称取6 份 0.5 g (Wf)迅速剪成小块。

2.  3份分别于120℃烘箱中烘考1~1.5 h,然后称此时的干重(Wd)

3.  3份分别放入蒸馏水中浸泡70 min,当达到恒重时称此时的重量(Wt)

4.  根据公式分别计算出植物的鲜重含水量、干重含水量、相对含水量

五、实验结果

植物生理实验 (   上午)组 (   十五   )小组(  鹅绒藤叶含水量 ) 数据

由上图数据得:鲜重含水量=81% 干重含水量=419% 相对含水量=94.2%

六、讨论

以下抽取了其他各组的实验数据做成表格,以进行对比

从上表中可以看出:不同植物之间的鲜重含水量和饱和含水量的差异并不大,而干重含水量的差异十分明显,说明不同植物的储水能力有较大差距,同时储水能力还受到环境、器官组织的差异、植物种类等各方面的影响。


第二篇:植物组织中可溶性糖含量的测定实验报告


植物组织中可溶性糖含量的测定实验报告

10科四 谭晓东 20102501024

一、实验目的

掌握蒽酮比色法测定可溶性糖含量的提取和方法原理;掌握分光光度计中标准曲线制作的使用程序。 二、实验原理

植物组织中的糖(包括还原糖和非还原糖)可以与浓硫酸反应生成糠醛,糠醛和蒽酮反应可以生成蓝绿色络合物,在625nm处有最大光吸收值。 三、实验材料

大白菜叶片与叶柄 四、实验步骤

1.可溶性糖的提取

大白菜叶柄和叶片各0.5g鲜重,研磨 + 10ml 80%乙醇

植物组织中可溶性糖含量的测定实验报告

3.样品液显色和比色

0.1ml提取液+0.9ml蒸馏水

80

度水浴30min

过滤后定容至25ml

沸水浴10min

冷却后对照标准曲线比色

五、实验结果

植物组织中可溶性糖含量的测定实验报告

标准方程:y=184.6x-1.973 R=0.9940

2.根据标准曲线测到,叶片的吸光度是0.249,葡萄糖浓度为43.96ug/ml,含糖量为13.82%;叶柄的吸光度为0.276,葡萄糖浓度为49.01ug/ml,含糖量为15.41%

六、分析与讨论

植物体内的可溶性糖和淀粉均是光合作用产物。可溶性糖以蔗糖为主,是植物糖类运输的主要形式,其次是葡萄糖、果糖、麦芽糖、戊糖和糖苷等。

可溶性糖在硫酸作用下生成糖醛或羟甲基糠醛化合物,糖醛或羟甲基糠醛可与蒽酮作用形成蓝绿色络合物

植物组织中可溶性糖含量的测定实验报告

(糖醛衍生物),在一定波长范围内,其颜色的深浅与糖含量有定量关系,在625 nm 波长下的吸光值与可溶性糖含量成正比。由于蒽酮与可溶性糖反应的呈色强度随时间变化,故必须在反应后立即在同一时间内比色。该实验方法简便,灵敏度高,可溶性糖含量在30 μg左右就能进行测定,所以可作为测定微量可溶性糖之用。

该法的特点是几乎可以测定所有的碳水化合物,不但可以测定戊糖与己糖含量,而且可以测所有寡糖类和多糖类,其中包括淀粉、纤维素等(因为反应液中的浓硫酸可以把多糖水解成单糖而发生反应),所以用蒽酮法测出的碳水化合物含量,实际上是溶液中全部可溶性碳水化合物总量.在没有必要细致划分各种碳水化合物的情况下,用蒽酮法可以一次测出总量,省去许多麻烦,因此,有特殊的应用价值.但在测定水溶性碳水化合物时,则应注意切勿将样品的未溶解残渣加入反应液中,不然会因为细胞壁中的纤维素、半纤维素等与蒽酮试剂发生反应而增加了测定误差.此外,不同的糖类与蒽酮试剂的显色深度不同,果糖显色最深,葡萄糖次之,半乳糖、甘露糖较浅,五碳糖显色更浅,故测定糖的混合物时,常因不同糖类的比例不同造成误差,但测定单一糖类时,则可避免此种误差。

从实验结果得出叶柄也叶片含糖量没有明显差别,而含糖量比较少。

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