病理生理学实验
动物实验则可人为地严格控制实验条件，在动物身上造病，并对动物进行观察，记录和分析，然后将在动物身上所获得的资料与临床的疾病表现进行比较、分析，从中引出疾病的发生、发展的规律。
病理生理实验目的：除验证课堂讲授的部分理论，加深理解外，更主要的是培养同学初步具有实验性研究疾病的技能，为今后临床医学研究打下基础。
实验要求：
1、养成正规的技能操作习惯，耐心细致地观察实验中出现的每个现象
2、不能主观臆造实验数据，做到准确、及时、客观地记录。
3、爱护实验器材，如有损坏要登记，按设备处规定酌情赔偿。
实验前核对器械、试剂、实验结束清洗，清点器械、试剂。
4、同学实验中分工明确，责任到人。轮流取送动物，打扫卫生。
5、按时交纳实验报告。
实验一 缺氧
一、几种类型缺氧
目的要求 1、在动物身上复制缺氧性、血液性缺氧，以了解各种类型缺氧对机体影响及其表现特点。
2、观察缺氧时动物的一般情况，呼吸和内脏血液颜色的变化。
二、实验步骤
1、 乏氧性缺氧
取钠石灰5g放入缺氧瓶内，观察瓶内小白鼠呼吸频率（次/分）、幅度、皮肤和口唇颜色，塞紧瓶塞，记录时间，每三分钟观察上述指标一次，记下动物死亡时间。
2、 CO中毒性缺氧
安装CO发生装置，用移液管向刻度试管中加入甲酸3ml，然后再加入浓硫酸2ml，塞紧橡皮塞，适当加热产生CO，随时观察上述指标。
3、 亚硝酸钠中毒性缺氧
取体重相近的两个小白鼠（甲、乙），观察正常指标。
甲鼠腹腔注射5％亚硝酸钠0.3ml+1％美兰0.3ml。
乙鼠腹腔注射5％亚硝酸钠0.3ml+1％生理盐水0.3ml
4、将各组死亡的小白鼠解剖腹腔，观察肝脏和皮肤粘膜、口唇颜色。
三、注意事项
1、按老鼠喜欢钻洞的习性让其进入瓶内
2、小白鼠腹腔注射，应头朝下，稍靠左下腹，注射器不能混用。
3、需密闭的缺氧瓶塞一定要塞紧，可用适量的水滴加在橡皮塞周围，以防漏气
4、每小组桌上都有浓硫酸与甲酸，在盘内使用，绝对不能打翻，因具有强腐蚀性，若滴在桌上、身上等，必须及时用自来水冲洗，用完后，试管立即用自来水冲洗干净（CO产生装置不一定密闭）
5、加热浓硫酸、甲酸时火焰不能过旺（防CO产生过多，致使小白鼠立即死亡，樱桃红色不明显），一般稍有冒泡即可，也不能煮沸后立即从火焰上移开，以防NaOH倒吸，加热时试管口绝不能对着人
6、美兰染料起到还原剂的作用,在专门注射盘中使用，防止美兰污染桌面，几个类型的缺氧死亡鼠要标记清楚
实验二 豚鼠高血钾症
实验步骤
1、豚鼠称重，用10%乌拉坦1ml/100g体重腹腔麻醉
3、设置打印正常心电图
4、腹腔注入10% kcl 1ml→5分钟→10%kcl 0.5ml→……
观察有变化时随时记录
5、观察到高血钾心电图后，自行选择抢救方案
4% NaHCO3 或10% CaCl2 或50%葡萄糖和胰岛素
6、继续注入kcl→室颤→开胸观察心脏停跳状态
实验注意事项
1、抓豚鼠时要小心，不要任意玩耍豚鼠，防被豚鼠抓伤。
2、腹腔麻醉 两人配合，头朝下，臀部朝上，左下腹注射麻药
插入踝部皮下，注意勿插进肌肉，因有肌电干扰。另外及时清除电极和电线周围的血和水迹，保持良好的导电状态
4、出现室颤开胸观察心脏停搏状态动作要迅速
典型的实验结果：
P波压低增宽， QRS波群压低增宽，T波高尖
Q-T间期缩短 传导阻滞，室颤
抢救方案：
4% NaHCO3 1、输入碱性溶液有利于钾从胞外移入胞内
2、注入高渗液后能使细胞外液容易迅速增加而起稀释作用，致血钾浓度相对下降。
3、钠离子具有对抗钾离子对心肌的作用，可以增加细胞的兴奋性，使心率加速。
10%氯化钙 钙对钾具有拮抗作用，但对血钾浓度无影响，应该注意的是注射氯化钙的速度过快会引起心律失常。
葡萄糖和胰岛素：由于细胞内合成糖原增多，钾离子由细胞外液转入细胞内（合成1g糖原时有0.5mmol的K+进入细胞内）所以可以降低血钾。
实验 呼吸功能不全
实验步骤
全麻下分离气管，插管，气管插管与呼吸传感器连接并记录正常呼吸曲线
复制窒息 完全窒息（不超过30秒钟） 观察皮肤颜色，窒息后记录呼吸曲线
解除窒息 10分钟左右呼吸恢复
复制气胸 兔右胸4~5肋间插入16号针头，5-10分钟记录呼吸曲线，抽尽胸腔内气体，封闭可能留下的通道。10分钟左右呼吸恢复。
复制肺水肿 抬高兔台，注射器针头插入气管插管分叉处，缓慢滴入10%葡萄糖液2ml，5-10分钟后，放平兔台，记录呼吸曲线
听诊器听到湿性罗音时,处死动物开胸,用线结扎两侧门, 肺取出肺称重
切开肺脏，观察有无泡沫液体流出。
注意事项：复制气胸的针头不能潮湿
复制气胸时针头钻入有一突破感，不能过深，否则损伤肺脏
50ml注射器抽吸空气后，针头和针筒一起拔出，封闭通道，滴入高渗葡萄糖时要缓慢，不要过快，防窒息。
处死动物时要结扎肺门，防水肿液流失
实验 肝性脑病
目的：采用肝大部分切除术，造成急性肝功能不全的动物模型，并以十二指肠插管灌注氯化铵溶液，观察血氨升高在肝性脑病机理中的作用。
步骤：
1、家兔称重全麻，仰卧固定于兔台上，腹部正中去毛
2、从胸骨剑突起，作上腹正中切口，切口长约8cm
3、打开腹腔，向下压肝，剪断肝与横膈之间的镰状韧带
4、再将肝叶向上翻，用手剥离肝胃韧带
5、用粗棉线在肝叶的根部结扎（仅留下二小叶），注意棉线不要剪去
6、用眼科小剪刀在十二指肠壁作一小切口，将导尿管插入肠腔约5cm，并固定导尿管防滑脱
7、 血管钳夹住腹壁切口，关闭腹腔
8、观察家兔角膜反射及对疼痛刺激反应
每隔5分钟向十二指肠插管中注入复方氯化铵溶液5ml，观察动物有无反应性增强，直至痉挛发作为止，记录所用的复方氯化铵溶液总量，并计算每公斤体重的用量。
分组：
1、实验组：
肝大部结扎，十二指肠插管注入氯化铵
2、对照组：
肝大部结扎，十二指肠插管注入生理盐水5ml/5分钟
3、假手术组：
分离肝脏（不结扎），十二指肠插管注入氯化铵5ml/5分钟
兔失血性休克
实验目的：
1． 复制失血性休克模型。
2． 观察动物失血前后的表现。
3． 探讨失血性休克的机理。
实验对象：家兔
实验用品：生物信号采集及分析系统（PowerLab）、压力换能器、呼吸换能器、心电导联线、体温计、注射器等。
实验步骤：
1． 家兔麻醉，固定。
2． 颈部手术：切开颈正中皮肤，分离气管和左侧颈总动脉，插入气管插管描记呼吸；插入颈动脉插管，接三通管，一侧记录血压，另一侧连注射器。
3． 放血前观察动物生理指标：一般情况，皮肤粘膜颜色，肛温、血压、心率、呼吸等。
4． 放血至血压为40mmHg止，血液置于与失血量等量的生理盐水中，混匀。放血速度适宜。放血量根据家兔大小确定，放血过程中观察血压变化。
[生理盐水和放血量计算方法：
放血量≈80ml/kg×体重（kg）×40％（ml）]
5． 维持血压在40mmHg 15-20分钟，观察失血期间动物生理指标改变。
6． 停止放血，回输血抢救。
注意事项：
1． 手术过程中尽量减少出血和休克。
2． 麻醉适度，过浅致动物疼痛可出现神经源性休克。
3． 动脉插管和回输血的注射器中事先加入肝素，以防凝血。
4． 放血前、后及回输血后，注意观察家兔的各项生理指标的变化。