篇一 :① 减压神经放电实验报告

减压神经放电实验

20##级临七3班    廖梦宇    2012021320

一、实验原理:

颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射,(carotid sinus-arotic arch baroreceptor reflex):

 即压力感受性反射(baroreceptor reflex),亦称为降压反射(depressor reflex)。动脉压力感受器是位于颈动脉窦和主动脉弓的外膜与中膜之间的一些裸露的神经末梢,可以感受血管壁的牵张度,反应血压的变化。来自压力感受器的冲动通过传入神经窦神经传导到舌咽神经,通过主动脉神经加入迷走神经,在家兔该神经则游离的较长,称为减压神经,传入神经进一步传导冲动先到达孤束核再与心血管中枢联系。减压反射是一种负反馈调节机制。它在平时经常起作用,使动脉血压维持在比较恒定的水平。

二、实验目的:

1、观察减压神经传入冲动的发放特征。

2、动脉血压变动时与减压神经传入冲动发放的相互关系。

三、实验步骤:

1.麻醉和固定 

(1)麻醉:25%乌拉坦溶液(1g/kg), 4ml/kg

      注射部位:耳缘静脉

 注意:①速度----缓慢!!!

       ②原则: “一快,二慢,三看看(观察)”

         观察:肌张力、角膜反射

(2)仰卧位固定

2. 手术

(1)颈部剪毛,颈正中切口约5~7cm,

(2)用止血钳纵向钝性分离颈部肌肉,

(3)分离一侧减压神经  

  血管神经鞘:颈总动脉、迷走、交感和减压神经。

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篇二 :家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导实验报告

 

            

     

20##年10月28日

【目的与要求】

1.学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。

2.学习在体神经冲动引导与记录的方法,理解主动脉神经的生理功能。

3.掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法 。

4.观察神经和体液因素改变对家兔动脉血压调节的影响,并分析该些因素的作用机制。

【实验原理】
    主动脉神经是主动脉弓压力感受器的传入神经,又称减压神经。神经传入冲动的频率,在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少,从而使压力感受性反射增强或减弱,以维持动脉血压的相对稳定。由于家兔主动脉神经独成一束,易于分离,故常用家兔为实验动物,进行主动脉神经冲动的引导与血压实验。

在正常的生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的,其中以颈动脉窦-主动脉弓压力感受器反射尤为重要。此反射即可使升高的血压下降,又可使降低的血压升高,故有血压缓冲反射之称谓。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察其作用。

【实验动物及器材】

  家兔、兔手术台,常用手术器械,止血钳、眼科剪、支架、气管插管、Pc-Lab生物信号采集系统、保护电极、纱布、棉球、丝线、 20ml注射器、20%-25%氨基甲酸乙酯,肝素,去甲肾上腺素,生理盐水;RM6240生物信号采集系统,手术剪1把,眼科剪1把,止血钳,镊子,电刺激连线,兔手术台,注射器及针头,血管插管,动脉夹,血压换能器,铁架台,婴儿秤,输液装置,照明灯,有色丝线;

【实验步骤】

1、实验动物准备

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篇三 :家兔动脉血压的神经体液调节实验报告

[目的与要求]

1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法

2观察神经,体液因素对心血管活动的影响

[基本原理]

在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用

本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来

[动物与器材]

家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000)

【方法与步骤】

1、实验仪器的准备

打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。

2、连通液导系统并制压

将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注,直至充满压力传感器的上方支管,并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有气泡)。继续向三通管内推注,同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化,如果压力下降,则需要检查液导系统的漏液原因,并重新制压。调节血压显示器的灵敏度,使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。

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篇四 :生理实验报告神经干复合动作电位

人体解剖及动物生理学实验报告

   

一、    实验题目

蟾蜍坐骨神经干复合动作电位(CAP)

A蟾蜍坐骨神经干CAP阈值和最大幅度的确定

B蟾蜍坐骨神经干CAP传导速度的确定

C蟾蜍坐骨神经干CAP不应期的确定

二、    实验目的

确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位(CAP)的

(1)临界值和最大值

(2)传导速度

(3)不应期(相对不应期、绝对不应期)

三、实验原理

神经系统对维持机体稳态起着重要作用,动作电位(AP)是神经系统进行通信联系所采用的信号,多个神经元的轴突集结成束形成神经,APs沿感觉神经有外周传向中枢或沿运动神经由中枢传向外周。坐骨神经干由上百根感觉神经和运动神经组成,分别联系腿部的感受器和效应器(骨骼肌)。如果电刺激一根离体的坐骨神经干,通过细胞外引导方式,就能记录到神经干复合动作电位(CAP)。一个CAP是一系列具有不同兴奋性的神经纤维产生的多个AP的总和。刺激强度越爱,兴奋的神经纤维数目就越多,CAP的幅度也就越大。与胞内引导得到的单细胞AP相比,CAP是双相电位,逐级递增(非全或无),并且幅度较小。

阈电位是指一个刚刚能观测到的CAP,所对应的刺激为阈刺激。在一定范围内增加刺激强度,CAP幅度相应增大。最大CAP所对应的最小刺激电位即最大刺激。

动作电位可以沿神经以一定的速度不衰减地传导,传导速度的快慢基于多种因素,这些因素决定了生物体对其坏境的适应性。它们包括神经的直径、有无髓鞘、温度等等。

神经在一次兴奋过程中,其兴奋性将发生一个周期性的变化,最终恢复正常。兴奋的周期性变化,依次包括绝对不应期、相对不应期等等。绝对不应期内,无论多么强大的刺激都不能引起神经再一次兴奋;相对不应期内,神经兴奋性较低,较大的刺激能够引起兴奋。绝对不应期决定了神经发放冲动(动作电位)的最高频率,保证了动作电位不能叠加(区别于局部电位),以及单向传导(只能有受刺激部位向远端传导,不能返回)的特性。不应期的产生依赖于细胞膜上特定离子通道的特点,如钠、钾离子通道。

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篇五 :生理因素及药物对呼吸运动及膈神经放电的影响实验报告

实验题目:生理因素及药物对呼吸运动及膈神经放电的影响实验报告

摘要:

【实验目的】

1.学习用计算机生物信号系统记录呼吸及膈神经放电的方法。

2.观察血液化学成分改变对呼吸运动及膈神经放电的影响。

3.观察肺牵张反射以及迷走神经在此反射中的作用。

【实验方法】气管插管法、空白对照法

【实验结论】机体通过呼吸调节血液中的O2、CO2、H+水平,动脉血中O2、CO2、H+的变化又通过化学感受器调节呼吸,维持机体内环境的相对稳定。

引言:

呼吸运动能够有节律地进行,并能适应机体代谢的需要,有赖于呼吸中枢的调节作用。体内外各种刺激可以直接作用于呼吸中枢或通过不同的感受器反射性地作用呼吸运动,由此调节呼吸运动的频率和深度,使肺通气能适应机体代谢需要。

材料与方法:

一、实验对象:家兔。

二、器材药品:哺乳动物手术器械一套、兔手术台、气管套管、注射器(20ml、5ml各一副)、30cm长的像皮管一根、纱布、线、引导电极固定架、三维调节器、玻璃分针、输液夹、压力换能器或张力换能器、BL-410计算机生物信号采集处理系统、20%氨基甲酸乙酯溶液、3%乳酸溶液、生理盐水和液体石蜡(加温38~40°C)、10%尼可刹米注射剂、氮气、CO2。

【实验步骤】

1.准备描记装置 二道生理记录仪参考参数:灵敏度2mv/cm,滤波30Hz,时间常数DC,基线中线。

2.手术

(1)麻醉固定 家兔称重后,用20%乌拉坦5ml/Kg由耳缘静脉缓慢注入,麻醉后仰卧固定于手术台上。

(2)颈部手术 颈部剪毛,在喉头下缘至胸骨上凹作正中切口,钝性分离肌肉至气管,作气管插管,在气管插管一侧管置呼吸传感器,通过计算机实时分析系统记录呼吸;也可用弯缝针在兔的剑突上皮肤穿一条线并固定,线的另一端连张力换能器,通过记录仪器记录呼吸。分离出两侧迷走神经穿线备用。

3.观察项目

(1)吸入增加CO2的气体 将装有CO2的气袋(可用呼出气体)的管口对准气管插管的一侧开口(中间留有间隙),并作标记,观察描记呼吸曲线的变化。

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篇六 :【报告】实验6:家兔动脉血压的神经与体液调节

家兔动脉血压的神经与体液调节

(浙江中医药大学 第一临床医学院  )

[摘要] 实验目的 采用直接测量和记录动脉血压的急性实验方法,观察神经和体液因素对动脉血压的调节作用。

[关键词] 动脉血压;神经调节;体液调节

1 实验材料 氨基甲酸乙酯,生理盐水,肝素,去甲肾上腺素,血压换能器,RM6240微机生物信息处理系统,止血钳,手术剪,棉线,针筒,动脉夹。

2 实验对象 家兔

3 实验方法

3.1 实验系统连接及参数设置 血压换能器固定在铁支柱上,高度与心脏同一平面。压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。

3.2 手术准备

3.2.1 麻醉固定 取家兔一只,称重2kg,按1g/kg体重的剂量沿耳缘静脉缓慢注射200g/L的氨基甲酸乙酯,用10ml麻醉不成功,又注射了3ml,共注射13ml,至呼吸深而慢,皮肤夹捏反射迟钝为停。背位固定。

3.2.2 颈部手术 剪去颈前被毛,颈前正中切开皮肤6~7cm,直至下颌角上1.5cm,用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉,暴露气管及气管平行的左、右血管神经鞘。细心分离右侧鞘膜内颈总动脉、颈外静脉、减压神经和迷走神经,左侧颈总动脉,穿线备用。

3.2.3 左颈总动脉插管 在左颈总动脉远心端结扎,近心端用动脉夹夹住,并在动脉下面穿线备用;用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口,将动脉插管向心方向插入颈总动脉内,扎紧固定;打开动脉夹。

3.2.4 右颈外静脉插管 稍稍提起右颈外静脉远心端的细线,用眼科剪朝心脏方向剪一“V”字形切口,将插管向心方向插入颈外静脉内,扎紧固定。

3.3 实验观察

3.3.1启动记录按钮,除去动脉夹,可见血液由动脉冲入动脉插管,微机生物信号采集处理系统开始采样记录血压数据,并在屏幕上显示血压波动曲线。

3.3.2 用动脉夹夹闭右侧颈总动脉30s,观察并记录血压变化。

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篇七 :【实验报告】骨胳肌单收缩与复合收缩神经干复合动作电位的观察与记录神经干不应期的测定

骨胳肌单收缩与复合收缩
神经干复合动作电位的观察与记录
神经干不应期的测定

姓名:

班次:

组别:

同组者:

实验日期:

目的和意义

目的:1 了解肌肉收缩过程的时相变化

2 观察刺激强度和频率对骨骼肌收缩形式的影响

3 了解神经干电位的时相变化

4 观察神经干不应期现象

肌肉兴奋的外在表现是收缩。当其受到一个阈上强度的刺激时,爆发一次动作电位,迅速发生一次收缩反应,叫单收缩。单收缩曲线分为潜伏期、收缩期、舒张期三个时期。在一定范围内,肌肉收缩的幅度随刺激强度的增加而增大。当肌肉相继受到两个以上同等强度的阈上刺激时,因刺激频率不同,后一次收缩会落在前一次收缩的不同时相内,从而形成不同形式的收缩曲线,如连续的单收缩、不完全强直收缩、完全强直收缩等。

神经干由多条神经纤维组成。由于各神经纤维兴奋性的不同,虽然每条纤维动作电位的产生都遵守“全或无”的方式,但神经干动作电位记录到的是多个兴奋阈值、传导速度和振幅各不相同的动作电位的总和,为一个复合动作电位,不存在严格的阈强度,也不表现为“全或无”的特征。在一定范围内神经干动作电位的幅度随刺激强度的增加而增大。

神经纤维在一次兴奋过程中,其兴奋性可发生周期性变化,包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期。为了测定神经一次兴奋之后兴奋性的变化,先给神经施加一个条件性刺激,引起神经兴奋,然后在前一兴奋过程的不同时相内给神经一个检验性刺激。通过检查神经对检验性刺激的反应来判断神经组织兴奋性的变化。

对象和器材

蟾蜍;

蛙板、剪刀、镊子、玻璃分针、铁支架、张力换能器、纱布、脱脂棉、烧杯、棉线;

屏蔽盒、RM6240B 生物信号采集处理系统;

林格溶液、清水。

方法和步骤

骨胳肌单收缩与复合收缩的观察

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篇八 :家兔动脉血压的神经与体液调节--浙中大机能学实验报告

浙江中医药大学实验报告

日期:20##-12

地点:机能学实验室15109

家兔动脉血压的神经与体液调节

【摘要】1. 目的:动脉血压是循环功能的重要指标之一,动脉血压过高或过低都会影响各器官的血液供应和心脏的负担。若动脉血压过低,将引起器官血液供应减少,尤其是脑和心脏等重要器官的供血不足,将导致严重后果。若血压过高,则心脏和血管的负担过重。长期高血压患者往往引起心脏代偿性肥大、心功能不全,甚至导致心力衰竭。血管长期受到高压,血管壁本身发生病理性改变,甚至可导致破裂而引起脑溢血等严重后果,所以保持动脉血压近于正常的相对稳定状态是十分重要的。本实验就是通过对家兔的颈动脉进行试验,掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法 ,观察神经和体液因素改变对家兔动脉血压调节的影响,并分析该些因素的作用机制。2.方法:实验仪器准备:连通液导系统并制压,压力换能器的调节(液体中含有柠檬酸钠,是体外抗凝剂); 动物准备:兔的麻醉与固定(20%氨基甲酸乙酯),气管插管, 左颈总动脉、右颈总静脉、右侧迷走神经、主动脉神经穿线备用,动脉插管(动脉连血压感受器)   3. 结论:夹闭一侧颈总动脉,夹闭右颈总动脉,注射去甲肾上腺素可使家兔血压升高;电刺激减压神经和迷走神经可使家兔的血压下降。

【关键词】动脉血压;去甲肾上腺素;电刺激;减压神经;迷走神经

Abstract】1. Purpose: artery blood pressure is one of the important indexes of circular function, arterial blood pressure too high or low will affect the various organs of the heart and blood supply of the burden. If the artery blood pressure is too low, will cause organ blood supply decrease, especially the brain and heart, and other important organ blood shortage, cause serious consequence. If high blood pressure, the heart and vascular burden overweight. Patients with high blood pressure often cause long-term decompensated heart hypertrophy, cardiac dysfunction, and lead to heart failure. For a long time by high pressure vessels, hemal wall itself happening pathological change, even can lead to burst and cause edema serious consequences, so keep arteries close to normal blood pressure of the relative stable state is very important. The experiment of rabbit is through the carotid artery experiment, master records and measurement of arterial blood pressure of direct measurement method, observation and humoral element changes on the nerve of the influence of arterial blood pressure adjustment, and analyzes the mechanism of action of some factors. 2. Methods: experimental instrument preparation: connect the system pressure and liquid system, the adjustment of the transducer pressure (liquid containing sodium citrate, is in vitro anticoagulation); Animal preparation: rabbit of anesthesia and fixed (20% amino acid ethyl ester), tracheal intubation, the left common carotid artery, right, right carotid vein vagus nerve, aortic neural threading spare, intravenous intubation (after a successful intubation injection heparin, anticoagulant), artery intubation (artery even blood pressure sensors) 3. Conclusion: Closed side common carotid artery,Closed right carotid artery, injection norepinephrine can make the rabbit elevated blood pressure; Electrical stimulation to the vagus nerve and nerve decompression can make the rabbit blood pressure drop.

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