设计性实验 神经体液对动脉血压和呼吸运动的调节

时间:2024.3.20

神经体液对动脉血压和呼吸运动的调节

[目的要求]

1.学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。

2.观察神经、体液因素对心血管活动的影响。

[基本原理]

在正常生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的,其中以颈动脉窦—主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可使升高的血压下降,又可使降低的血压升高,故有血压缓冲反射之称谓。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察其作用。

本实验是应用液导系统直接测定动脉血压。即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉内,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传递到压力传感器,并由计算机采集系统记录下来。

[动物与器材]

家兔、兔手术台、常用手术器械、止血钳(4~6把)、眼科剪、支架、双凹夹、气管插管、动脉插管、三通管、动脉夹、计算机采集系统、压力传感器、保护电极、照明灯、纱布、棉球、丝线、注射器 (1 ml、5 ml、20 m1)、生理盐水、4%柠檬酸钠、20%~25%氨基甲酸乙酯、肝素(200 U/ml)、肾上腺素(1:5 000)、乙酰胆碱(1:10 000)。

[方法与步骤]

1.实验仪器的准备

打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。

2.连通液导系统并制压

将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注,直至充满压力传感器的上方支管,并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有气泡)。继续向三通管内推注,同时观察显示器上压力变化。当加压到120 mmHg时即可关闭三通管。观察压力是否发生变化,如果压力下降,则需要检查液导系统的漏液原因,并重新制压。调节血压显示器的灵敏度,使30~130 mmHg的变化都能在显示器上明显地反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。

3.动物的准备

1)麻醉动物

取家兔一只,称重并剪去耳缘静脉上的被毛。用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注20%(或25%)氨基甲酸乙酯(5ml/kg体重)进行麻醉。注射时注意:先从耳缘静脉尽可能远心端注射(第一次注射不成功时,可稍向近心一些注射),注射时速度要慢,并随时观察动物情况。当动物四肢松软、呼吸变深变慢、角膜反射迟钝时,表明动物已被麻醉,即可停止注射。

2)固定与剪毛

将动物背位固定于手术台上,用剪毛剪将颈部手术野的被毛剪去,即可进行手术。

3)切开皮肤

术者一手的拇指和示指按住家兔颈部两侧,另一手持手术刀,在紧靠喉头下缘,沿颈部正中线作一长约5~7cm的皮肤切口。然后用止血钳或手术剪分离皮下结缔组织后,夹住少许皮肤并向两侧分开创口。

4)分层分离肌肉及气管插管

术者与助手分别持止血钳轻轻提起少许气管正上方的肌肉(距离要尽可能近),然后用手术剪在两止血钳夹住的肌肉之间,纵向(沿肌肉纤维走向)将肌肉层剪开一个小口(亦可用止血钳创开口)。用剪刀或止血钳将创口纵向扩大,再用止血钳夹住少许肌肉,向两侧分开肌层。继续用两把止血钳夹住下层气管上方的少许肌肉,轻轻提起,同法剪开并扩大肌肉创口。如此层层分离肌肉,直至看见肌肉层下方的气管(如果创口不够大,亦可用两手示指深入创口后再向前后方撕裂肌膜,使创口扩大)。用止血钳向气管两侧拉开最后一层肌肉,暴露出气管,再进行气管插管:将气管与周围组织钝性分离,在气管上做一“⊥”形切口,插入“Y”形气管套管,并用线将气管套管结扎固定。手术时,注意切口不可偏离气管上方,不可横向剪断肌肉,以免造成血管断裂而出血。切口也不要过于扩大,以免造成气胸。如果发现肌肉或血管有少量出血,可用浸过温热生理盐水的纱布(不可过湿)轻轻按压止血;如果出血不止,应立即用止血钳夹住出血部位,然后用棉线结扎止血。

5)分离主动脉神经

家兔颈部的神经、颈总动脉被结缔组织膜包在一起,形成血管神经束,位于气管两侧,其腹面被胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌所覆盖。术者用拇指和示指轻轻捏住分离的肌肉和皮肤,使示指向上顶而拇指向外翻,即可将血管神经束翻于示指之上。用弯头玻璃分针轻轻划开局部结缔组织束膜,仔细辨认3种神经与颈总动脉(图4—19):颈总动脉呈红色,有波动,壁有较强的弹性;迷走神经最粗,有较好的韧性,色洁白,一般位于外侧;交感神经较细,略呈灰色,一般位于内侧;主动脉神经最细,一般位于两神经之间。由于主动脉神经纤细,离开神经、动脉束的包膜后则难以分辨,所以应在原自然位置首先找到,并用玻璃分针沿纵向轻轻划动,分离出2 cm左右(此神经的韧性很差,易于拉断,分离时需十分小心)。用玻璃分针轻轻挑起分离后的神经,再用弯头眼科镊由神经下方穿过,将一浸过生理盐水的彩色丝线放于镊子内,轻轻收回夹住丝线的眼科镊,穿好线并打一活结备用。如果不能辨认出3条神经,则可先在颈总动脉下方穿过一条粗棉线(方法同上,但只分离很小一段动脉,需保留其前后的结缔组织束膜)。当轻轻提起动脉时即可看清3条神经,同法分离主动脉神经。分离主动脉神经、迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过,轻轻张开止血钳,分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁,外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线,分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经(一侧动脉用于插管测压,另侧动脉实验用)。由于家兔的品种不同,个体之间也有差异,常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认,需以对血压的影响为准。

4.动脉插管

首先用5m1注射器从耳缘静脉注入肝素(200 U/kg体重)以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下:

将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎(务必扎紧,以防渗血),然后在另一备用线的向心侧 (尽可能近心端),用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线,用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方,沿向心方向斜向剪开动脉上壁(注意:不可只剪开血管外膜,也切勿剪断整个动脉,剪口大小约为管径的一半)。一手持弯头眼科镊,将其一个弯头从剪口处插进动脉少许,轻轻挑起剪开的动脉上壁,另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅,可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁,另一手拿住动脉插管,顺势轻轻推进至6—8mm左右(如果手感滞涩,说明插管并未进入动脉,必须退出插管,重新剪口再插),用

备用线将动脉连同进入的插管扎紧(插管不可因扎线松动而滑出,亦不可漏液),并将余线系在插管的固定侧支上,以免滑脱。注意:插管应与动脉血管的方向一致,以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹,可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳,此时显示器上出现血压的波动曲线。

5.实验观察

(1)观察正常血压曲线 调节扫描速度与增益,可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。有时可以观察到血压曲线随呼吸变化,心搏为一级波,呼吸波为二级波。然后将扫描速度调慢,观察正常血压曲线。

(2)刺激迷走神经 记录对照血压、呼吸描记曲线后,刺激迷走神经,观察血压、呼吸有何变化。

(3)刺激另一侧迷走神经 待血压、呼吸渐渐趋于稳定后,刺激另一侧迷走神经,观察血压、呼吸有何变化。

(4)刺激一侧交感神经 待血压、呼吸渐渐趋于稳定后,刺激一侧交感神经,观察血压、呼吸有何变化。

(5)注射肾上腺素 待血压、呼吸渐渐趋于稳定后,耳缘静脉注射0.2ml肾上腺素,观察血压、呼吸有何变化。

(6)夹闭颈动脉 待血压、呼吸渐渐趋于稳定后,用动脉夹夹闭未插管一侧颈动脉,观察血压、呼吸有何变化。

(7)剪断一侧主动脉神经 待血压、呼吸渐渐趋于稳定后,剪断未插管侧的主动脉神经,观察血压、呼吸有何变化。

(8)剪断一侧交感神经 待血压、呼吸渐渐趋于稳定后,剪断未插管侧的交感神经,观察血压、呼吸有何变化。

(9)剪断一侧迷走神经 待血压、呼吸渐渐趋于稳定后,剪断未插管侧的迷走神经,观察血压、呼吸有何变化。


第二篇:家兔动脉血压神经体液调节


家兔动脉血压神经体液调节

201 级生物科学二班 学号:

1.实验目的

1.1学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。

1.2 观察神经、体液因素对心血管活动的影响。

2.实验原理

在正常生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的,其中以颈动脉窦—主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可使升高的血压下降,又可使降低的血压升高,故有血压缓冲反射之称。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察其作用。

本实验是应用液导系统直接测定动脉血压。即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉内,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传递到压力传感器,并由计算机采集系统记录下来。

3.实验动物和器材

家兔、兔手术台、常用手术器械、止血钳(4~6把)、眼科剪、支架、双凹夹、气管插管、动脉插管、三通管、动脉夹、计算机采集系统、压力传感器、保护电极、照明灯、纱布、棉球、丝线、注射器(1 m1、5 ml、20m1)、生理盐水、4%柠檬酸钠、20%-25%氨基甲酸乙酯、肝素(200 U/m1)、肾上腺素(1:5 000)。

4.实验步骤

4.1 家兔麻醉固定:称重,耳缘静脉注射麻醉剂。待兔被麻醉后,将兔背位固定于手术台上,剪颈部皮毛。

4.2 气管插管:钝性分离颈部肌肉等组织,暴露气管,在气管背面穿线,再用手术刀手术剪在气管上方作T形切口;用制作好的棉签将气管中的血块弄出,沿向心方向插好气管插管并用线扎紧,防止松脱。

4.3分离右侧主动脉神经:用食指中指和拇指将右侧颈部肌肉等组织翻起,看到有弹性的颈总动脉,在其旁边可看到白色的粗的迷走神经,然后在旁边用后玻璃分针(完好无破损)找出最细的减压神经,穿2条线备用。

4.4 分离右侧迷走神经,穿2条线备用。

4.5 分离右侧的右颈总动脉,穿1条线备用。

4.6 分离左侧颈总动脉(3厘米长),穿2线备用,用于插管。

4.7 注射肝素(200U/kg体重)。

4.8 动脉插管法:

动脉夹夹住左侧颈总动脉靠心端

结扎左侧颈总动脉靠头端,检查分支

在结扎线下方2mm剪向心1/2切口

用眼科镊插进动脉切口,确定在动脉内,然后挑起动脉上壁,将动脉插管由眼 科镊下方开口处插入动脉内,用备用线扎死动脉和套管并挂住套管上,用另一动脉夹固定结扎部位。

4.9 实验仪器的准备

打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。

4.10 连通液导系统并制压

将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注,直至充满压力传感器的上方支管,并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有气泡)。继续向三通管内推注,同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化,如果压力下降,则需要检查液导系统的漏液原因,并重新制压。调节血压显示器的灵敏度,使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。

4.11实验观察

(1)观察正常血压曲线 调节扫描速度与增益,可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。有时可以观察到血压曲线随呼吸变化,心搏为一级波,呼吸波为二级波。然后将扫描速度调慢,观察正常血压曲线。

(2)轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线,用动脉夹夹闭30s(于夹闭前记录动脉通畅时的血压曲线),观察并记录血压变化。出现变化后即取下动脉夹,记录血压的恢复过程。

(3)记录对照血压曲线后,用手指按压颈动脉窦(下颌下方内侧),观察并记录血压变化。当血压明显下降时,则停止按压,待血压恢复(如果血压反而升高,说明按压的是血管,需重新寻找按压位置)。

(4)刺激主动脉神经 使刺激输出端连接保护电极,轻轻提起主动脉神经上的备用线,小心地将神经置于保护电极之上。记录对照血压曲线后,再用中等强度的连续电脉冲信号,通过保护电极,刺激神经10-20s。血压出现明显下降后即可停止刺激,并待血压恢复。如果血压并不下降,可调整刺激强度或刺激频率再行刺激。任何刺激都无效时,则表示此神经并非主动脉神经。需要重新辨认神经后再行实验。

(5)分别刺激主动脉神经中枢端和外周端 双结扎主动脉神经后(务必扎紧),从两扎线结之间剪断神经。记录对照血压后,同法分别刺激神经的中枢端和外周端,观察并记录血压变化。

(6)刺激迷走神经 记录对照血压后,用同样的方法刺激迷走神经,观察血压下降曲线与(4)有何不同(如果血压下降很快、很低,应立即停止刺激)。

(7)结扎并剪断迷走神经 同时结扎双侧迷走神经后剪断,观察血压有何变化。

(8)刺激迷走神经外周端 分别刺激两侧迷走神经外周端,观察并记录血压变化有何不同。

(9)肾上腺素对血压的影响 记录对照血压曲线后,用1 m1注射器,从耳缘静脉注入0.1~0.3 m1肾上腺素溶液,观察并记录血压变化及恢复曲线。

5.实验结果及分析

家兔动脉血压神经体液调节

图1 正常血压曲线

家兔动脉血压神经体液调节

图2 夹闭对侧颈总动脉

家兔动脉血压神经体液调节

取下动脉夹

家兔动脉血压神经体液调节

图3 按压颈动脉窦

家兔动脉血压神经体液调节

图4 刺激主动脉神经

家兔动脉血压神经体液调节

图5 刺激主动脉神经中枢端

家兔动脉血压神经体液调节

图6 刺激主动脉神经外周端

家兔动脉血压神经体液调节

图7 刺激迷走神经

家兔动脉血压神经体液调节

图8 刺激迷走神经中枢端

家兔动脉血压神经体液调节

图9 刺激迷走神经外周端

家兔动脉血压神经体液调节

图10 肾上腺素对血压的影响

(注:因本组做实验时仪器无法输出刺激,故刺激迷走神经和主动脉神经的实验结果借鉴第三组的实验结果)

6.分析与讨论

6.1 夹闭颈总动脉使颈动脉窦血压下降,颈动脉窦压力感受器受到刺激减弱,导致血压升高,如图2所示。相反的,按压颈动脉窦使颈动脉窦压力感受器受到刺激增强,导致血压降低,如图3所示。

6.2 主动脉神经又称减压神经,兔减压神经是单纯的传入神经,其作用是将冲动传入延髓的心血管中枢,引起血压降低。因此,刺激完整的主动脉神经或其中枢端,导致血压下降,如图4、5所示。而刺激其外周端不会引起血压变化。如图6所示。

6.3 刺激迷走神经使其中的副交感神经纤维兴奋,产生负性变时、变力、变传导作用,出现心率减慢,心输出量下降,血压下降,如图7所示。而迷走神经与主动脉神经不同,并不是单纯的传入神经,因此刺激其中枢端和外周端都能引起血压降低,如图8、9所示。

6.4 肾上腺素能使心肌收缩力加强、兴奋性增高,传导加速,通过增加心输出量,

使血压升高,如图10所示。

7.参考文献

崔庚寅 解景田 主编。生理学实验释疑解难。第一版。北京:科学出版社,20xx年。

更多相关推荐:
实验四 心血管活动的神经体液调节

实验目的学习记录哺乳动物动脉血压的直接测定方法并观察神经体液因素对心血管活动的调节实验原理在正常生理情况下心血管活动受神经体液和自身机制的调节心脏受交感神经和副交感神经的支配心交感神经兴奋时使心率加快心肌收缩力...

家兔动脉血压的神经体液调节实验报告

目的与要求1学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法2观察神经体液因素对心血管活动的影响基本原理在正常人体内任何高等动物的动脉血压时相对稳定的这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的其中以静动脉窦主动脉弓压力感...

家兔动脉血压的神经与体液调节--浙中大机能学实验报告

浙江中医药大学实验报告日期20xx12地点机能学实验室15109家兔动脉血压的神经与体液调节摘要1目的动脉血压是循环功能的重要指标之一动脉血压过高或过低都会影响各器官的血液供应和心脏的负担若动脉血压过低将引起器...

【实验报告】家兔动脉血压的神经体液调节 影响尿生成的因素

生理实验报告实验六家兔动脉血压的神经体液调节影响尿生成的因素实验目的1234间接观察心血管活动的神经体液性调节学习哺乳动物动脉血压的直接测定方法学习用膀胱插管法记录尿量的方法观察与分析几种因素对尿生成的影响实验...

实验十一 家兔动脉血压的神经、体液调节

生理学实验报告中山大学生命科学学院实验十一家兔动脉血压的神经体液调节介绍一123二实验目的学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法观察神经体液因素对心血管活动的影响背景资料...

生理实验 心血管活动的神经体液调节

郑州澍青医学高等专科学校教案郑州澍青医学高等专科学校教案

心血管活动的神经体液调节

心血管活动的神经体液调节目的和原理目的以动脉血压为指标观察整体情况下一些神经体液因素对心血管活动的调节心脏和血管受神经体液和自身调节机制的调节神经调节是指中枢神经系统通过反射调节心血管的活动各种内外感受器的传入...

生理学神经、体液因素对血压和心率的影响实验报告模板

实验人员实验日期20xx年10月19日室温27大气压1个标准大气压实验名称神经体液因素对血压和心率的影响一实验目的通过观察神经体液因素对血压心率的影响加深对影响动脉血压因素和动脉血压调节机制的理解二实验对象家兔...

实验十一_家兔动脉血压的神经、体液调节

生理学实验报告中山大学生命科学学院生理学实验报告实验内容课程名称实验人院系专业学号年12月日1家兔动脉血压的神经体液调节生理学实验邓晓娟张优本次由邓晓娟执笔生命科学学院生命科学13941201139412022...

实验3 家兔动脉血压的神经体液调节

实验3家兔动脉血压的神经体液调节徐忠浙江中医药大学13级预防医学1班6组20xx1220xx01004实验目的动脉血压是循环功能的重要指标之一动脉血压过高或过低都会影响各器官的血液供应和心脏的负担若动脉血压过低...

心血管活动的神经体液调节

心血管活动的神经体液调节目的和原理支配心脏的传出神经主要为心交感神经和心迷走神经心交感神经兴奋可致心率加快房室交界的传导加快心房肌和心室肌的收缩能力加强而心迷走神经兴奋可致心率减慢心房肌收缩能力减弱房室传导速度...

心血管活动的调节

人体机能学实验报告姓名**专业临床二系年级20**级4班日期20XX年11月9日【实验名称】心血管活动的调节【实验目的】观察和验证心血管活动的神经体液调节机制;了解和掌握哺乳动物急性实验技术以及动脉血压的直接测…

心血管活动的神经体液调节实验报告(15篇)