实验报告

唐贝对糖尿病模型小鼠治疗作用的实验研究

材料与方法

1.      材料

1.1实验动物：C57BL/6J小鼠，Ⅱ级，雄性，体重18±2g，购自中国医学科学院实验动物中心；合格证号：京动许字003。

1.2 主要试剂：
链脲佐菌素（STZ）：Sigma公司产品；

柠檬酸：西陇化工产品；

柠檬酸三钠：西陇化工产品；

1.3实验器材：

0.25ml注射器；

0.22μ m微孔滤膜；

罗氏乐康全血糖仪及血糖试纸；

电子天平

2.  方法

2．1动物分组及造模方法：

取C57BL/6J小鼠40只，抽签法随机分为3组：

模型组：5只，禁食不禁水12小时，腹腔注射STZ40mg/kg体重（STZ临用前用0.1mol/L、PH4.5的柠檬酸缓冲液配成1%STZ溶液，经0.22μ m微孔滤膜过滤除菌），每天1次，连续5天；

正常组：5只，禁食不禁水12小时，腹腔注射等量柠檬酸缓冲液，每天1次，连续5天；

唐贝组：5只，禁食不禁水12小时，腹腔注射STZ40mg/kg体重（STZ临用前用0.1mol/L、PH4.5的柠檬酸缓冲液配成1%STZ溶液，经0.22μ m微孔滤膜过滤除菌），每天1次，连续5天；模型成功后，灌胃给予唐贝0.9g/kg体重，每天一次，连续10天。

2.2统计学处理：

数据用SPSS10.0统计软件进行处理。

结果

血糖的变化

在实验过程中，我们动态观察了小鼠血糖的变化。结果显示：造模后，模型组及唐贝组小鼠的血糖与正常组小鼠相比显著升高（P＜0.001）；给药第5天时，唐贝组小鼠血糖有所降低；给药第10天时，唐贝组小鼠血糖比模型组小鼠明显降低（P＜0.001）。

注：与正常组比较 ﹡P＜0.05  ﹡﹡﹡P＜0.001。

与模型组比较 △P＜0.05  △△△P＜0.001。

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普萘洛尔对提高小白鼠心肌耐缺氧力作用

【实验目的与要求】

观察普萘洛尔对提高小白鼠耐缺氧能力的作用，了解用小白鼠进行耐缺氧的实验方法。

【实验原理】

异丙肾上腺素为β肾上腺素受体激动药，能激动 β1 受体，对心脏的兴奋作用强大，可使心收缩力增强，心率加快，传导加速．心输出量增多，并明显增加心肌耗氧量，同时可促进糖原和脂肪分解，增加组织耗氧量。普萘洛尔为β肾上腺素受体阻滞药，可阻断心脏 β1 受体，使心率减慢，收缩力减弱，心输出量减少，传导减慢，心肌耗氧量下降，并可抑制糖原和脂肪分解，减少组织耗氧量。

【实验材料】

动物：小白鼠 3只

药物：1%盐酸普萘洛尔溶液 生理盐水 0.05%异丙肾上腺素 钠石灰 凡士林 络合碘

器材：电子天平 大烧杯 250ml广口瓶3个 纱布 1ml注射器 针头 棉签

【实验步骤】

1、 抓取小白鼠3只，称重，标号，并观察正常表现。

2、 第一次给药：

1号小鼠 腹腔注射 0.05%异丙肾上腺素 剂量0.2mL/10g

2号小鼠 腹腔注射 0.05%异丙肾上腺素 剂量0.2mL/10g

3号小鼠 腹腔注射 生理盐水 剂量0.2mL/10g

给药后观察小鼠的表现。

3、15min后第二次给药：

1号小鼠 腹腔注射 0.2%盐酸普萘洛尔溶液 剂量0.2mL/10g

2号小鼠 腹腔注射 生理盐水 剂量0.2mL/10g

3号小鼠 腹腔注射 生理盐水 剂量0.2mL/10g

给药后观察小鼠的表现。

4、3min后，取250ml玻璃磨砂广口瓶3个，瓶内分别放入6g用纱布包裹的碱石灰，每个瓶内放入小鼠1只，迅速盖上玻璃瓶盖，并记录时间。

5、观察小白鼠活动，记录各小鼠死亡时间。

【实验结果】

【注意事项】

1、缺氧瓶必须完全密闭不漏气，可用凡士林涂在瓶口。

2、小鼠腹腔注射部位应稍靠左下腹，勿损及肝脏，还应避免将药液注入肠腔或膀胱。

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西安交通大学

学生实验报告

课程名称： 药物化学

实验名称： 阿司匹林（乙酰水杨酸）的合成

姓 名：

学 号：

指导教师：

日 期： 20XX年8月22日

学生实验报告

三、实验报告内容：

1、实验目的及要求

1、通过本实验，掌握阿司匹林的性状、特点和化学性质；

2、熟悉和掌握酯化反应的原理和实验操作；

3、巩固和熟悉重结晶的原理和实验方法；

4、了解阿司匹林中杂质的来源和鉴别。

2、实验设备、仪器及材料

[仪器] 锥形瓶、温度计、水浴器、铁架台及其附件、玻璃棒、吸滤瓶(布氏漏斗)、漏斗、滤纸、烧杯、结晶皿，量筒。

[药品] 水杨酸、醋酐、浓硫酸、乙酸乙酯、饱和碳酸氢钠、1%三氯化铁溶液、浓盐酸。

3、实验内容与步骤

实验原理及实验步骤

实验原理

阿司匹林为解镇痛药，用于治疗伤风、感冒、头痛、发烧、神经痛、关节痛及风湿病等。近年来，又证明它具有抑制血小板凝聚的作用，其治疗范围又进一步扩大到预防血栓形成，治疗心血管疾患。阿司匹林化学名为2-乙酰氧基苯甲酸，化学结构式为：

阿司匹林为白色针状或板状结晶，mp.135~140℃，易溶乙醇，可溶于氯仿、乙醚，微溶于水。

合成路线如下：

实验步骤：

一、酯化

1、在250ml的锥形瓶中，加入水杨酸2.0g，醋酐5.0ml；

2、然后用滴管加入5滴浓硫酸，缓缓地旋摇锥形瓶，使水杨酸溶解。

3、将锥形瓶放在水浴上慢慢加热至85~90℃，维持温度10min。

4、然后将锥形瓶从热源上取下，使其慢慢冷却至室温。

二、初步精制

1、将阿司匹林粗品放在150ml烧杯中，加入饱和的碳酸氢钠水溶液25ml。

2、搅拌到没有二氧化碳放出为止(无气泡放出，嘶嘶声停止)。

3、有不溶的固体存在，真空抽滤，除去不溶物并用少量水（5-10ml）洗涤。

4、另取150ml烧杯一只，放入浓盐酸4-5ml和水10ml，将得到的滤液慢慢地分多次倒入烧杯中，边倒边搅拌。

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药理学实验报告

                      学校：

                      学院：

班级：

学号：

                      姓名：

                      指导老师：

元胡止痛片对小鼠镇痛抗炎镇痛活性研究

组员：                              指导老师:

摘要：目的：研究元胡止痛片是否具有镇痛抗炎的效果。 方法：使用小鼠热板法、醋酸扭体法、耳肿胀法，并分别建立小鼠的镇痛抗炎模型，观察元胡止痛片对小鼠的镇痛抗炎作用的影响。结果：1.热板法：元胡止痛片对小鼠热板法实验中给药60分钟后有显著性差异，阳性药阿司匹林与生理盐水组相比有明显的痛阈降低，低浓度与生理盐水组相比有痛阈降低。2. 醋酸扭体法：实验结果有显著差异，阿司匹林阳性药与高浓度元胡溶液相比有显著性差异，阳性药有明显的镇痛作用。而阿司匹林组与生理盐水，低浓度与生理盐水组没有出现显著性差异。3. 热肿胀法：结果显示无显著性差异，阳性药阿司匹林没有明显的抗炎活性。结论：阿司匹林阳性药有抗炎镇痛作用，元胡止痛片无抗炎镇痛作用。

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地西泮的镇静作用

一、目的

（1）学习镇静药物的实验方法。

（2）学习地西泮的镇静作用的机制、观察地西泮镇静效果

二、原理

苯二氮?类的中枢作用主要与药物加强中枢抑制性神经递质GABA功能有关，为神经元膜上的配体门控性Cl离子通道。GABA作用于GABAa受体，使细胞膜对氯离子通透性增加，氯离子大量进入细胞膜引起膜超级化，使神经元兴奋性降低。苯二氮?类与GABAa受体复合物上的BZ受点结合，可以诱导受体发生构象变化，促进GABA与GABAa受体结合，增加氯通道开放的频率而增加氯离子内流，产生中枢抑制效应。

三、器材

小鼠灌胃针头、电子称、秒表、透明小箱子

四、药物

0.05%地西泮水溶液、蒸馏水

五、动物

生长发育状况相似的雄性小鼠8只

六、方法

18只小鼠分别编号1-8,取1-4号小鼠为甲组，5-8号小鼠为乙○

组，分别称重并记录。

2分别将甲组和乙组的小鼠放置到两个透明小箱子内，先适应○

2分钟，然后分别开始观察并记录两组小鼠的走动及其他活动情况次数，记录10分钟，作为实验前的对照。

3将小鼠取出，甲组小鼠用4mg/ kg的地西泮水溶液灌胃，给○

药容量为0.2ml/10g。乙组小鼠用蒸馏水灌胃，给药容量为0.2ml/10g。

4分别将甲组和乙组的小鼠放置到两个透明小箱子内，先适应○

2分钟，然后分别开始观察并记录两组小鼠的走动及其他活动情况次数，记录10分钟，得到给药后的对照值。

○5计算每只小鼠的自发活动抑制率，自发活动抑制率=100%×（给药前小鼠自发活动数-给药后小鼠自发活动数）/给药前小鼠自发活动数；

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实验一、药理学实验的基础知识

一、实验动物的基本技能和实验技术基础

1、 实验动物的标记

大、小鼠和白色家兔的标记常用3～5％黄色苦味酸溶液涂于皮毛上标号。常用的方法：

1号 ---左前腿

2号 ---左腰部

3号 ---左后腿

4号 ---头部

5号 ---正中

6号 ---尾根部

7号 ---右前腿

8号 ---右腰部

9号 ---右后腿

10号 ---不标记

2、实验动物的捉持（大、小鼠）

(1)小鼠的捉持 用右手提起鼠尾，放在粗糙物（如鼠笼盖）上面，向后轻拉鼠尾；用左手拇指和食指捏住其两耳颈背部皮肤，将小鼠固定在掌中，使其腹部朝上，然后以无名指和小指夹住鼠尾或小鼠的左后肢。

（2）大鼠的捉持 捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，并应动作轻柔。用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉鼠尾；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。

3、实验动物的给药方法（大、小鼠）

（1）小鼠的给药方法

灌胃（ig）：将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，压其头部，使口腔与食道成一直线，沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。如遇阻力，可将针头抽出再插，以免刺破食管或误入气管。一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。

皮下注射（H或sc）：常在背部皮下。轻轻捏起背部皮肤，将注射针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易摆动则表明针尖位于皮下。然后注入药液。一般给药量为0.1～0.20ml/10g（体重）。

腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm，一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。

肌内注射(im)：多注射于后肢股部肌肉，一般每侧不超过0.1ml。

尾静脉注射（iv）：将小鼠置于固定筒内，使尾部露在外面，用70％～75％的乙醇棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～59?C温水中，待尾部左右侧静脉扩张后，左手拉尾，右手进针。一般给药量为0.1～0.2ml/10g

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实验一 动物实验基本知识

一、实验目的

通过药理学实验的基础知识的学习和练习,掌握药理学实验的基本技能和方法。

二、实验内容

（一）教学电影：动物基本知识与实验技术；

（二）实验：

三、实验仪器、设备

实验动物：家兔、小鼠、

实验器材：小鼠固定器家兔固定器、注射器兔台，手术器械，注射器，丝线，纱布等

四、实验方法与步骤

1、教师示教过程

小鼠、大鼠的捉拿灌胃，腹腔注射，皮下注射，标记.家兔捉拿、固定、灌胃、静脉注射，肌肉注射等。重点示教小鼠、大鼠的捉拿灌胃.

2、学生自己做实验操作练习。

小鼠、大鼠的捉拿灌胃，腹腔注射，皮下注射，标记.家兔捉拿、固定、灌胃、静脉注射，肌肉注射等。

1、捉持法 以右手提鼠尾，将小鼠放于粗糙面上，将鼠尾轻轻向后拉，以左手

的拇指及其食指捏双耳及头部皮肤，无名指、小指及掌心夹其背部皮肤及其尾部，便可将小鼠固定。

2、灌胃 左手持小鼠，使腹部朝上，颈部拉直，右手拿灌胃器子口交插入口腔，

从舌面紧沿上颚进入食道。若遇阻力，应退出后再插。

3、皮下注射 一人抓小白鼠头部皮肤，右手拉鼠尾，另一人左手捏背部皮肤，

右手持注射器刺入背部皮肤。

4、腹腔注射 左手抓小白鼠，右手持注射器。取30?将针头从下腹部刺入腹腔。

5、尾静脉注射 将小白鼠置于固定筒内或倒置的大漏斗下，使鼠尾露出在外。

用酒精棉球擦鼠尾，使血管扩张。左手拉住尾尖，选一条扩张最明显的尾静脉将针头刺入血管，推药。若有阻力，且局部变白，则需从新刺入血管。 1

小结: 实验的认真及参与情况,实验室守则和实验的基本要求。同学在实验过程中出现的问题。

五、实验报告要求

实验中认真观察实验现象，将实验记录在原始数据表格中，实验结束后，指导教师检查并签字。撰写实验报告要求内容完整、结论正确、书写规范、条理清楚、有分析、有讨论，并在规定时间内完成，及时交予实验指导教师。

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