家兔呼吸运动的调节
一、正常呼吸曲线的记录
家兔正常的呼吸曲线
曲线上升阶段为吸气;下降阶段为呼气。
吸气时肺扩张,剑突软骨上升,拉着剑突软骨的细线放松;呼气时肺缩小,剑突软骨下降,细线紧绷。因此曲线上升阶段为吸气;下降阶段为呼气。
二、各种影响因素所造成的呼吸曲线的改变
增加无效腔后呼吸运动曲线
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家兔呼吸运动的调节
一、正常呼吸曲线的记录
家兔正常的呼吸曲线
曲线上升阶段为吸气;下降阶段为呼气。
吸气时肺扩张,剑突软骨上升,拉着剑突软骨的细线放松;呼气时肺缩小,剑突软骨下降,细线紧绷。因此曲线上升阶段为吸气;下降阶段为呼气。
二、各种影响因素所造成的呼吸曲线的改变
增加无效腔后呼吸运动曲线
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华 南 师 范 大 学 实 验 报 告
学生姓名 何茂辉 学号 20062501302
专 业 生物科学 年级、班级 06科三
课程名称 生理学实验 实验项目
实验类型 □验证□设计□综合 实验时间 09 年 5 月 25 日
实验指导老师 黄秀明、胡学军 实验评分
家兔呼吸运动的调节
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Lab #10 Control of Respiratory Movement
(模拟实验)
I. Introduction.
呼吸幅度和频率受到体内O2 分压CO2 分压以及H+ 浓度这些化学因素的反射性调节,以适应机体代谢的需要。神经传导也影响呼吸幅度和频率。
实验目的:分析化学因素及神经传导对呼吸运动的影响。
II. Experimental procedures.
1.鼠标器压下左右移动浏览实验场景
2.移动鼠标器,熟悉实验设施
3.点击拖动器械盘中塑胶气管至流量头,增加无效腔
4.点击气体考克,增加兔吸入气中氮气或二氧化碳的浓度
5.点击拖动器械盘中注射器至兔耳注射乳酸
6.点击拖动手术刀至兔颈部切断双侧迷走神经
7、实验完成后,按停止按钮进行数据测量
III. Result
1.将塑胶气管插入流量头处,增大无效腔。
图1 增大无效腔后家兔呼吸信号变化
增大无效腔后呼吸加深,频率加快。无效腔是指未进行气体交换的一部分肺泡容量,包括解剖无效腔和肺泡无效腔。且肺泡通气量 =(潮气量﹣无效腔气量)× 呼吸频率,所以当给家兔气管插管的侧管连接50cm长的胶管时,增大了解剖无效腔,使肺泡通气量减少,因此家兔通过调节增大潮气量即呼吸加深,增加呼吸频率是肺泡通气量保持不变,维持正常呼吸。
2.1. 打开考克,增大兔子呼吸进入的CO2量
图2 增加二氧化碳吸入量后家兔呼吸信号变化
CO2浓度增加使呼吸运动加强 CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素,它不但对呼吸有很强的刺激作用,并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。每当动脉血中PCO2增高时呼吸加深加快,肺通气量增大,并可在一分钟左右达到高峰。由于吸入气中CO2浓度增加,血液中PCO2增加,CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多, CO2+H2O→H2CO3→HCO3- +H + 。 CO2通过它产生的 H+ 刺激延髓化学感受器,间接作用于呼吸中枢,通过呼吸机的作用使呼吸运动加强,此外,当PCO2增高时,还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器,反射性地使呼吸加深加快。
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2012/9/21 温度:31°C 湿度:75%
家兔呼吸运动的调节
20##级内科学—XXX 2012010133
[摘要] 目的 观察血液中Pco2,Po2和[H+]改变对家兔呼吸运动(呼吸频率、节律、幅度)的影响,观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用 方法 通过增大无效腔,增大CO2分压,缺氧,快速注射2%乳酸,先后切断迷走神经,采用MedLab生物信号采集处理系统记录家兔的呼吸曲线观察呼吸运动的改变情况。 结果 增大无效腔,增加CO2分压,快速注射乳酸后,可使家兔通气量、呼吸频率及平均呼吸深度明显增加;剪断一侧迷走神经对呼吸运动影响不大,剪断双侧迷走神经,呼吸变深变慢。 结论 机体通过呼吸调节血液中的O2、CO2、H+水平,动脉血中O2、CO2、H+的变化又通过化学感受器调节呼吸,迷走神经加速吸气向呼气转换,使呼吸频率增加,参与维持机体内环境的相对稳定。
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家兔呼吸运动的调节
吕帅洁
摘要:为观察血液中化学因素(PCO2、PO2、[H﹢])改变对家兔呼吸运动(呼吸频率、节律、幅度)的影响;观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用;掌握气管插管术和神经血管分离术。通过在气管插管的情况下通过增大无效腔气量、增加吸入PCO2、注射乳酸、剪断迷走神经、电刺激迷走神经中枢端等方法,
用微机生物信号处理系统观察家兔呼吸运动的变化。实验显示增大无效腔气量、提高PCO2、注射乳酸均可使家兔呼吸加深加快,而剪断一侧及两侧迷走神经、电刺激迷走神经中枢端则使其呼吸变浅,频率变慢。因此提高吸入气体PCO2,降低PO2可导致呼吸加深加快;迷走神经是呼吸运动调节反射中的传入神经,剪断一侧及两侧迷走神经后,可通过反馈调节使呼吸变浅,频率加快。 关键词:呼吸运动 迷走神经 CO2分压 H﹢浓度
材料和方法[1]
1、材料
家兔;CO2;氨基甲酸乙酯;乳酸;呼吸换能器;微机生物信号采集处理系统。
2、方法
2.1手术准备
2.1.1麻醉固定 家兔称重后,按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。待兔麻醉后,将其仰卧,先后固定四肢及兔头。
2.1.2手术 剪去颈前被毛,颈前正中切开皮肤6 ~7cm,直至下颌角上
1.5cm,用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉,暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘,细心分离两侧鞘膜内迷走神经,在迷走神经下穿线备用。分离气管,在气管下两根粗棉线备用。
2.1.3气管插管 在环状软骨下约1cm处,做倒T形剪口,用棉签将气管切开及气管里的血液和分泌物擦净,气管插管由剪口处向肺端插入,插时应动作轻巧,避免损伤气管粘膜引起出血,用意粗棉线将插管口结扎固定,另一棉线在切口的头端结扎止血。
2.2实验系统连接及参数设置
用胶管连接流量头与气管插管,流量头连接呼吸流量换能器。呼吸换能器输出线连接微机生物信号处理系统。打开RM6240系统:点击“实验”菜单,选择“呼吸运动调节”,仪器参数:通道时间常数为直流,滤波频率30Hz,灵敏度10cmH2O(或50ml/s),采样频率800Hz,扫描频率1s/div。连续单刺激方式,刺激强度5 ~10V,刺激波宽2ms,刺激频率30Hz。
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家兔呼吸运动神经的调节
【实验目的】
1.学习测定兔呼吸运动的方法。
2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。
3.学习哺乳类动物的手术操作,掌握气管插管和神经血管分离术
4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制
5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理
【实验器材】
1.1 动物 体重2.5 kg家兔 (rabbit),雌雄不拘。
1.2 器材 BL420E+生物信号处理系统,呼吸换能器(pressure-gradient transducer)
1.3 药品试剂 20%乌来糖(urethane), 12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate),5%碳酸氢钠( Sodium bicarbonate),N2,CO2。
【实验步骤】
1. 家兔称重,按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔,家兔麻醉后将其仰卧,固定四肢和头。
2. 颈部手术 颈正中切口5~7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用,用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。
3. 气管插管 用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管,结扎固定。
4. 将气管插管一端连接呼吸换能器。
5观察记录(observations)
1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量
2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化
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家兔呼吸运动的调节
(浙江中医药大学 第一临床医学院 )
关键词:呼吸运动、调节
[摘要]目的:观察血液中化学因素改变对家兔呼吸运动(呼吸频率、节律、幅度)的影响,初步探讨其作用部位,并分析机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用,初步探讨其机制。掌握气管插管术和神经血管分离术。
方法:手术分离家兔气管,
二 实验材料:
(1)动 物:家兔
(2)器 械:动物手术器材(手术刀、手术剪、止血钳、玻璃分针,丝线,注射器,兔台),气管插管,50cm的胶管,体重秤,呼吸换能器,球胆,电刺激连线,RM6240微机生物信号采集处理系统。
(3)药品和试剂: CO2、20g/L乳酸、氨基甲酸乙酯。
三 实验方法:
(1)仪器连接与标定:RM6240系统:点击“实验”菜单,选择“呼吸运动调节”。
(2)麻醉固定:家兔称重后,按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。待兔麻醉后,将其仰卧,先后固定四肢及兔头。
(3)手 术:剪去颈前被毛,颈前正中切开皮肤6~7cm,直至下颌角上1.5cm,用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉,暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘,细心分离两侧鞘膜内迷走神经,在迷走神经下穿线备用。分离气管,在气管下穿两根粗棉线备用。
(4)气管插管:在环状软骨下约1cm处,做倒T形剪口,气管插管由剪口处向肺部插入,插时动作应轻巧,避免损伤气管粘膜引起出血,用一粗棉线将插管口结扎固定,另一棉线在切口的头端结扎止血。
(5)项 目 观 察 :
1)观察正常呼吸曲线(正常呼吸曲线的频率和幅度)
2)增加无效腔(观察呼吸频率和幅度变化)
3)增加吸入气中CO2的分压 (观察呼吸频率和幅度变化)
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家兔呼吸运动的调节实验
[目的要求]
1学习记录家兔呼吸运动的方法。
2 观察并分析肺牵张反射及不同因素对呼吸运动的影响。
[基本原理]
人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、节律性地进行,是由于体内调节机制的存在。体内、外的各种刺激,可以直接作用于中枢或不同部位的感受器,反射性地影响呼吸运动,以适应机体代谢的需要。肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
[动物与器材]
家兔、兔体手术台,手术器械、张力传感与滑轮或动物呼吸传感器、生物机能实验系统、20ml与50ml注射器、橡皮管、20%或25%氨基甲酸乙酯、生理盐水、0.5%KCN装有CO2的气袋、装有纳石灰的气袋。
[方法与步骤]
急性动物实验时,记录呼吸运动的方法有三种,一种是通过压力传感器与气管插管连接记录;另一种是通过系在胸(或腹)部、装有压力传感器的呼吸带记录;第三种是通过张力传感器记录隔肌运动。
先将动物麻醉、固定、进行颈部气管、动脉及神经分离术,插入气管插管,分离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经,穿线备用。
1、剑突软骨分离术
切开胸骨下端剑突部位的皮肤,再沿腹白线切开长约2ml的切口。细心分离表面的组织(勿伤及胸骨),暴露出剑突与骨柄,用金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄,使剑突软骨于胸骨完全分离,但必须保留附于其下方的隔肌片,并使之完好无损。此时隔肌的运动可牵动剑突软骨。
2、将系有长线的金属钩钩住游离的剑突软骨中间部位,线的另一端通过万能滑轮系于张力传感器的应变梁上。
3、开启计算机采集系统,接通张力传感器的输入通道,调节记录系统,使呼吸曲线清楚地显示在显示器上。
4、实验观察
(1)记录呼吸运动曲线,并仔细识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。
(2)增加无效腔对呼吸运动的影响
将长约1.5m、内径1cm的橡皮管连与气管的一个侧管上,然后用止血钳夹闭另一侧管,以增加无效腔。观察并记录呼吸运动曲线的改变。一旦出现明显变化,则立即打开止血钳,去除橡皮管待呼吸正常。
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